生物传感系统滤光片应用分析:光谱选择、荧光分离与多通道检测

2026-10-06 林树鑫

在采用光学读出的生物传感系统中,滤光片的作用并不只是“留下某一个波长”,而是要在光源、待测样品、生物识别反应、光学系统和探测器之间建立可控的光谱通道。特别是在荧光检测、吸收光度检测、多波段分析和多通道生物检测中,目标信号往往很弱,而激发光、环境光、散射光和相邻通道信号却可能明显更强,因此滤光片的选择会直接影响系统信噪比、通道串扰和最终检测稳定性。

需要说明的是,滤光片并不是所有生物传感器的必备元件。现代光学生物传感还包括表面等离子体共振(SPR)、光波导、光学谐振器、光子晶体等多种架构,这些系统可能通过共振位置、折射率变化或干涉信号完成无标记检测,对滤光片的依赖程度与荧光系统并不相同。


滤光片

一、生物传感系统为什么需要滤光片?

一个典型的光学生物传感过程可以简化为:

光源 → 光谱选择 → 样品/生物识别区域 → 光谱分离 → 光电探测器 → 信号处理

真正困难的地方通常不是“有没有光”,而是探测器接收到的光中,有多少来自目标生物信号,又有多少属于背景。

例如荧光检测中,进入样品的激发光通常远强于样品产生的荧光。如果残余激发光、散射光或者光源的非目标波段进入探测器,即使荧光本身确实存在,也可能被背景淹没。常规荧光光学系统因此经常组合使用激发滤光片、二向色镜和发射滤光片。相关研究也指出,荧光发射信号通常明显弱于激发光,因此光谱滤除是控制检测背景的重要环节。

滤光片在这里承担的其实是“光谱门控”:让有用光进入下一阶段,同时把会形成检测噪声的波段尽可能挡在探测器之外。

二、荧光生物传感:为什么通常需要三类滤光元件?

荧光生物传感是滤光片应用最典型的场景之一,包括荧光免疫分析、实时荧光 PCR、荧光成像、部分 POCT 设备以及流式细胞检测等。

典型落射式荧光光路可表示为:

光源 → 激发滤光片 → 二向色镜 → 样品 → 二向色镜 → 发射滤光片 → 探测器

其中,激发滤光片选择能够有效激发荧光物质的波段,同时减少光源中不需要的谱线;二向色镜根据波长选择性反射和透射,使激发光与返回的荧光走向不同光路;发射滤光片进一步阻挡残余激发光、散射光以及其他非目标波段,只让需要检测的荧光信号进入探测器。这也是目前常见荧光显微和荧光传感光路的基本配置。

这里最容易出现的误区,是直接按照某种荧光染料的“峰值波长”选一片滤光片。

实际设计需要考虑的是完整的激发谱、发射谱、光源输出谱和探测器响应曲线。如果激发谱和发射谱距离较近,也就是 Stokes shift 较小时,滤光片通带边缘、二向色镜切换区域以及带外截止性能都会变得更加敏感。

GIAI 当前中文产品体系中已经公开了荧光定量 PCR、流式细胞仪和 POCT 细胞分析等生化医疗滤光片应用页面,这些系统均体现了窄带滤光片、二向分光元件和检测光路之间的组合关系。

三、吸收光度和比色型生物传感:滤光片负责建立测量波段

并不是所有生物检测都采用荧光。

在吸收光度、比色反应以及部分生化检测系统中,仪器通常让特定波长的光通过反应液,再检测透射光变化。此时滤光片的任务更接近“建立测量通道”:

光源 → 检测波段滤光片 → 样品 → 探测器

如果系统具有多个检测项目,可以采用多个固定波长通道,通过窄带或带通滤光片分别获得不同波段的光学信号。GIAI 现有生化分析仪相关内容也采用“光源—波长选择—反应杯—探测器”的系统逻辑。

这种系统并不是带宽越窄越好。FWHM 缩小通常有利于提高波长选择性,但同时也可能减少进入探测器的有效光能,因此必须在光谱选择性、光通量和信噪比之间进行权衡。

四、多通道生物传感为什么更容易出现串扰?

实时荧光 PCR、流式细胞仪以及多色荧光检测系统通常需要同时区分多个荧光通道。

当系统只有一个通道时,只需要解决目标信号和背景之间的分离;进入多通道系统以后,还需要解决:

通道 A 的信号不能过多进入通道 B,通道 B 的激发光也不能成为通道 A 的背景。

因此,多通道系统通常不能把每一片滤光片单独设计,而要把激发滤光片、二向色镜、发射滤光片、光源以及探测器作为一整套光谱系统进行匹配。

GIAI 当前公开的实时荧光 PCR 页面就包含多种荧光通道及激发/发射光谱组合;流式细胞仪页面同样采用多级滤光和二向色分光,把不同波段信号送往对应探测通道。

因此,对于多通道生物传感系统,真正需要控制的不是某一片滤光片的“中心波长是否正确”,而是整个系统的光谱交叉量和通道隔离能力。

五、生物传感系统滤光片应重点看哪些参数?

参数对系统的影响常见设计问题
CWL / 通带位置决定目标波长能否有效通过只按峰值选型,没有结合完整光谱
FWHM / 通带宽度决定采集光能和光谱选择性过窄损失信号,过宽增加背景
Peak / Average Transmission影响有效信号光通量只追求高透过,不看截止
Blocking Range / OD抑制激发光、环境光及其他通道只有 OD 数值,没有定义截止波段
Edge Steepness影响相邻波段分离激发与发射距离很近时容易串扰
AOI会影响干涉型滤光片光谱位置实际安装角度与测试角度不同
Polarization倾斜入射系统中可能影响光谱表现只按正入射曲线评估
Clear Aperture / 尺寸决定实际有效光束是否完整通过光谱合格但装入系统后截光

其中 **AOI(入射角)**尤其容易被忽略。对于干涉型滤光片,入射角改变后光谱位置可能发生偏移,因此检测曲线必须和实际使用角度对应,而不能仅凭一条没有入射条件的光谱曲线判断整机性能。

六、为什么“OD 越高”并不等于生物传感效果一定越好?

在弱光检测里,截止深度当然重要,但只写一个“OD4”“OD5”并不能完整定义滤光片。

工程上至少还需要回答两个问题:在哪里达到这个 OD?需要截止多宽的波段?

例如目标荧光位于某个较长波段,但光源在更宽范围内仍有残余输出。如果滤光片只在激发峰附近提供较高截止,而在其他能够被探测器响应的波段没有充分抑制,系统仍然可能产生背景。

因此,截止指标应该写成:

Blocking Range + Optical Density + 测试条件

而不是只有一个孤立的 OD 数字。

同样,系统噪声也不完全由滤光片决定。光路中的杂散光、样品散射、镜片表面反射、结构漏光以及探测器自身噪声,都可能限制最终信噪比。因此,滤光片设计应该服务于整机光路,而不能脱离系统单独追求某一个漂亮参数。


GIAI 生物传感与生化医疗滤光片项目

激埃特光电当前公开产品体系包含光学滤光片、二向色镜、分光元件等光学组件,并设有生化医疗滤光片分类,现有应用方向包括荧光定量 PCR、流式细胞仪、POCT 细胞分析以及生化分析等。

在具体项目中,滤光片是否适合不能仅依据名称判断。激埃特可根据图纸、规格或现有样品进行项目级技术评估;实际制造与检测路线需要结合光谱要求、材料、尺寸、镀膜条件、AOI 和验收要求确认。 

如果项目已有光源波长、激发/发射光谱、CWL、FWHM、截止范围、OD、AOI、尺寸或光路图,可在询价阶段一并提供,以便进行滤光片及光学元件匹配评估。

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